Абстрацт

Цистанцхе десертицола, позната као „Роу‑Цонг‑Ронг“, је добро позната лековита и јестива хомологна биљка која припада породици Оробанцхацеае. Ова студија је систематски процењивала профиле активних компоненти и ин-витро антиоксидативни капацитет међу различитим деловима ткива (горњи, средњи, доњи сегменти) две врсте Цистанцхеа зависне од домаћина, наиме Халокилон-параситизед Цистанцхе (ХЦ, Халокилон аммодендрон домаћин) и Тамарик‑параситизед Тамарик-парассис, ТЦ домаћин (Тамарик-Цистанцхе ТЦ). Све сировине су убране из округа Целе, префектура Хотан, Синђианг, Кина.

Уочене су значајне разлике међу варијететима и унутар биљног ткива за биоактивне супстанце. За Тамарик-паразитизовану Цистанцхе, садржај укупних полифенола, укупних флавоноида, укупних шећера и вербаскозида показао је опадајући градијент: доњи део > средњи део > горњи део. Укупни полифенол (38,35 мг ГАЕ/г ДВ) и укупни флавоноид (35,61 мг РЕ/г ДВ) доњег сегмента ТЦ достигли су 2,47 пута и 10,95 пута у поређењу са доњим ткивом ХЦ, респективно. Горњи сегмент Халокилон-паразитизоване Цистанцхе садржао је највећу концентрацију ехинакозида (92,93 мг/г ДВ) у свим тестираним узорцима. Укупни садржај тритерпеноида у доњим ткивима обе варијанте био је статистички већи него у средњим и горњим ткивима (П<0.05), with HC lower part reaching peak value of 6.75 mg OAE/g DW.

Обе варијанте поседовале су изванредне антиоксидативне перформансе у уклањању слободних радикала. Доњи сегменти су дали супериорну антиоксидативну моћ: вредности ДППХ ИЦ₅₀ су биле 7,15 мг/мЛ (ХЦ-нижи) и 5,95 мг/мЛ (ТЦ-нижи); Вредности АБТС⁺ ИЦ₅₀ достигле су 5,19 мг/мЛ (ХЦ‑ниже) и 3,28 мг/мЛ (ТЦ‑ниже). Пирсонова корелациона анализа је открила значајно негативну корелацију између ИЦ₅₀ антиоксидативних индикатора и нивоа садржаја укупних полифенола, укупних флавоноида, проантоцијанидина, укупних шећера и вербаскозида.

Експериментални налази потврђују да су горњи сегменти Халокилон-паразитизованог Цистанцхеа богати ехинакозидом; нижи сегменти Тамарик-паразитизоване Цистанцхе акумулирају обиље полифенола, флавоноида, сахарида и вербаскозида. Овај скуп података пружа практичну теоријску подршку за формулацију стандарда квалитета, оцењивање сировина и дубоки функционални развој прехрамбених производа за Цистанцхе десертицола узгајану у Синђангу.

Кључне речи: Цистанцхе десертицола; сорта домаћина; део ткива; биоактивна једињења; ин-витро антиоксидативна активност; лековито-јестива биљка

1. Увод

Цистанцхе десертицолаје обавезна нефотосинтетичка биљка паразитска у корену документована у кинеској фармакопеји, а њена осушена љускава сочна стабљика служи као традиционална тоник сировина за индустрију додатака исхрани и биљне медицине. Два комерцијално важна екотипа широко расту у пустињским зонама Ксињианг: један паразитира на коренимаХалокилон аммодендрон(Цхеноподиацеае, Халокилон-хост Цистанцхе), а други инфицирају коренов системТамарик рамосиссима(Тамарицацеае, Тамарик-хост Цистанцхе)Гоогле за....

Као паразитска врста отпорна на стрес, Цистанцхе може да преживи у сланом-алкалном тлу, пустињи у кориту реке и сушним пешчаним стаништима. Регија Ксињианг Хотан представља једну основну базу за вештачко узгајање Цистанцхеа у Кини. Годишња производња локалног узгојеног Цистанцхеа премашује 8 000 тона, задовољавајући преко 90% потражње домаћег тржишта у континенталној Кини.

Савремена фитокемијска истраживања показују да фенилетаноидни гликозиди, полисахариди, тритерпеноиди, иридоиди и полифенолне супстанце чине главне биоактивне фракције Цистанцхе десертицола. За фенилетаноидне гликозиде (ехинакозид и вербаскозид као репрезентативни маркерски молекули) је потврђено да испољавају више биолошких функција: антиоксидацију, регулацију цревне микробиоте, хепатопротекцију, неуропротективне ефекте, имуномодулацију, антитуморске и анти-ћелијске експерименте у експерименталном експерименту са животињама. за.... Екстракти растворљиви у води и фракције гликозида Цистанцхеа уграђени су у чај, чврста пића и биљне формулације вина као функционални адитиви за храну. Тржишна потражња за висококвалитетним узгојеним Цистанцхеом наставља да расте из године у годину.

Ресурси дивљег цистанча се смањују, ограничени смањењем популације дивљих биљака домаћина. Вештачке плантаже великих размера постале су главни пут за задовољавање индустријске потрошње сировина. Ипак, недоследност квалитета широко постоји међу комерцијалним Цистанцхе серијама. Окружење за узгој, минерално стање у земљишту, микробна заједница ризосфере, тип биљке домаћина и различити сегменти ткива са једне меснате стабљике све то доводи до значајних флуктуација у концентрацији биоактивних супстанци. Таква хетерогеност квалитета ствара препреке за једнообразно оцењивање, контролу квалитета и даље експлоатацију производа Цистанцхе сировина.

Претходна литература је извештавала о варијацијама Цистанцхе компоненти између порекла; међутим, систематски упоредни подаци који покривају две главне сорте које се гаје у Ксињиангу у горњим-средњим-доњим сегментима стабљике остају недовољни за индустријску референцу. У овом истраживачком раду, Халокилон-параситизед Цистанцхе и Тамарик-параситизед Цистанцхе прикупљени из округа Целе (Хотан, Ксињианг) су усвојени као предмет истраживања. Квантификовали смо више кључних био-једињења и проценили антиоксидативни капацитет за уклањање слободних радикала ДППХ и АБТС⁺ за сваки сегмент ткива. Даље је израчуната корелација између хемијских састојака и учинка антиоксиданата. Резултати имају за циљ да обезбеде емпиријску основу за сортирање сировина, утврђивање спецификације и развој функционалних производа високе вредности за Цистанцхе десертицола која се узгаја у Синђангу.

2. Материјали и методе

2.1 Биљни материјали, хемијски реагенси и лабораторијски инструменти

Свежи узорци Халокилон-хост Цистанцхе и Тамарик-хост Цистанцхе узорци потичу из округа Целе, Хотан, Ксињианг, Кина. Одабрани су интактни узорци без површинских механичких повреда. Свака цела месната стабљика ручно је подељена подједнако на три дела: горњи сегмент, средњи сегмент, доњи сегмент. Сегментирани узорци су лиофилизовани вакуумском сушењем замрзавањем, уситњени у прах, просејани кроз сито од 60-месх, запечаћени и сачувани у хлађењу од 4 степена за накнадну хемијску анализу.

Аутентични референтни стандарди: гална киселина, рутин, проантоцијанидин, олеанолна киселина, Д-глукоза, вербаскозид, ехинакозид су купљени од Схангхаи Иуание Био‑Тецхнологи Цо., Лтд. Метанол и мрављу киселину хроматографског квалитета испоручио је, Лтд. Синопхарм, Лтд. Остало за аналитику. хемикалије су биле комерцијално доступни домаћи производи.

Главни аналитички инструменти: електронска аналитичка вага Меттлер‑Толедо ПЛ203/01; Еппендорф ТГЛ‑16М брза расхладна центрифуга; ДК‑98‑1 термостатско водено купатило; Тецан М200 читач микроплоча; Агилент‑1260 Инфинити ИИ течна хроматографија високих перформанси (ХПЛЦ); ФД‑1А‑50 вакуум замрзивач; Пуркиње ТУ‑1810 УВ‑Вис спектрофотометар; уређај за ултразвучно чишћење каде.

2.2 Експериментални аналитички протоколи

Сви експерименти екстракције и детекције су спроведени у три примерка биолошких реплика. Методологије мерења су се позивале на раније објављене протоколе са мањим прилагођавањима.

2.2.1 Одређивање укупног садржаја полифенола

Фолин-Циоцалтеу колориметријски тест је примењен за квантификацију укупног полифенола. Укратко, 0,3 г узорка праха Цистанцхе помешаног са 30 мЛ 70% раствора етанола. Ултразвучна екстракција је изведена под снагом од 250 В током 30 мин. После центрифугирања на 4 000 р/мин током 10 мин, супернатант је разблажен 10 пута као радни раствор узорка. Узмите 1,0 мЛ раствора узорка, додајте 5,0 мЛ дестиловане воде плус 1,0 мЛ Фолин-Циоцалтеу реагенса. После хомогенизације додати 3,0 мЛ 7,5% воденог раствора натријум карбоната. Држите реакциону смешу у тамном окружењу 30 минута. Забележите очитавање апсорбанције на таласној дужини 760 нм. Прорачунска формула калибрационе криве: \\(и=0.018к-0,0079\\), \\(Р^2=0.9969\\). Коначни резултати су изражени као милиграм еквивалента галне киселине по граму сувог узорка (мг ГАЕ/г ДВ).

2.2.2 Одређивање укупног садржаја флавоноида

Коришћена је колориметријска метода натријум нитрит-алуминијум нитрата. 1.0 мЛ течности узорка је помешана са 0,4 мЛ 5% раствора НаНО₂, инкубирана 6 мин. Додати 0,4 мЛ 10% раствора Ал(НО3)₃ и држати још 6 мин. Затим убризгати 4,0 мЛ 4% раствора НаОХ, додати 70% етанола до укупне запремине од 10 мЛ. Одмарати 10 минута пре спектрофотометријског очитавања на 505 нм. Стандардна крива: \\(и=0.0069к-0,0024\\), \\(Р^2=0.9991\\). Резултати су представљени као еквивалент мг рутина/г суве тежине (мг РЕ/г ДВ).

2.2.3 Одређивање укупног садржаја шећера

Усвојена је колориметријска метода фенол-сумпорне киселине. Раствор узорка је разблажен дестилованом водом до концентрације од 0,1 мг/мЛ. Извуците 2,0 мЛ раствора узорка, уградите 1 мЛ фенолног реагенса, полако сипајте 5,0 мЛ концентроване сумпорне киселине. Вртложна мешавина и загревање у воденом купатилу на 100 степени 30 мин. Охладити на собну температуру, измерити апсорбанцију на таласној дужини од 490 нм, дестилована вода постављена као празна референца. Калибрациона крива \\(и=0.0082к-0,002\\), \\(Р^2=0.9993\\). Резултати: мг еквивалента декстрозе по граму суве тежине (мг ДЕ/г ДВ).

2.2.4 Одређивање укупног садржаја тритерпеноида

Раствор узорка од 0,4 мЛ је пребачен у епрувету. Растварач је упарен у купатилу са топлом водом, а затим охлађен. Додати мешани реагенс који садржи 0,4 мЛ 5% раствора ванилин-глацијалне-сирћетне киселине и 1,6 мЛ перхлорне киселине. Инкубирајте 15 минута на воденом купатилу на 60 степени. После хлађења додати 5,0 мЛ етил ацетата, хомогенизовати и оставити 15 мин. Апсорбанца је очитана на 560 нм. Стандардна формула регресије \\(и=0.048к+0.00766\\), \\(Р^2=0.9963\\). Излаз података: мг еквивалента олеанолне киселине / г суве тежине (мг ОАЕ/г ДВ).

2.2.5 Одређивање садржаја проантоцијанидина

Спектрофотометријска процедура ванилин-хлороводоничне киселине. Узмите 0,5 мЛ раствора узорка; додати 3,0 мЛ 4% раствора ванилин-метанола и 1,5 мЛ концентроване хлороводоничне киселине. Реаговати 10 мин на собној температури; детектовати вредност апсорпције на 500 нм. Стандардна крива: \\(и=0.422к+0.0812\\), \\(Р^2=0.9993\\). Јединица: мг еквивалента проантоцијанидина / г суве тежине (мг ПЦЕ/г ДВ).

2.2.6 ХПЛЦ квантификација ехинакозида и вербаскозида

ХПЛЦ параметри детекције усклађени са Цистанцхе монографијом Кинеске фармакопеје. Хроматографска колона: Аллтима Ц₁₈ аналитичка колона (4,6 мм × 250 мм, 5 μм). Систем мобилне фазе: мобилна фаза А (метанол), мобилна фаза Б (0,1% водени раствор мравље киселине). Процедура елуирања градијента: 0–17 мин, 26,5 % А /73,5 % Б; 17–20 мин, 29,5 % А /70,5 % Б; 20–37 мин, 29,5 % А /70,5 % Б. Температура колоне одржавана на 25 степени; брзина протока подешена на 1,00 мЛ/мин; УВ детекција таласна дужина 330 нм; запремина ињекције 10 μЛ. Калибрациона крива ехинакозида: \\(и=17395.5к-11283.4\\), \\(Р^2=0.9999\\). Калибрациона крива вербаскозида: \\(и=13663.1к-15072.6\\), \\(Р^2=0.9998\\).

2.2.7 Процена антиоксидативне активности ин-витро

Прашак узорка 1,2 г екстрахован је апсолутним етанолом растварачем; Ултразвучна екстракција од 250 В током 40 мин, центрифугирана на 4 500 р/мин током 15 мин. Основни раствор супернатанта (40 мг/мЛ) је серијски разблажен у градијенте концентрације (3 мг/мЛ, 5 мг/мЛ, 10 мг/мЛ, 20 мг/мЛ, 30 мг/мЛ, 40 мг/мЛ) за тестирање антиоксиданса.

ДППХ тест уклањања слободних радикала: У микроплочи са 96 јажица, 50 μЛ раствора узорка помешаног са 200 μЛ ДППХ радног раствора. Хомогенизирати, инкубирати 30 мин у тамном стању, измерити вредност апсорпције на 517 нм. Формула стопе уклањања радикала ДППХ:

\\(ДППХ\\ радикал\\ брзина уклањања\\%=\\лефт(1-\\фрац{A_1-A_2}{A_0}\\ригхт)×100\\) Где: \\(A_0\\)=апсорбанција етанола плус ДППХ раствора; \\(A_1\\)=апсорбанција раствора узорка плус ДППХ реагенс; \\(A_2\\)=апсорбанција дестиловане воде помешане са раствором узорка. За израчунавање вредности ИЦ₅₀ (полуинхибициона концентрација) коришћена је нелинеарна регресија. Нижа вредност ИЦ₅₀ одговара јачем капацитету за елиминисање радикала.

АБТС⁺ анализа уклањања катјона-радикала: АБТС матична течност (7 ммол/Л) помешана подједнако са 2,45 ммол/Л раствора калијум персулфата, држана у мраку 12–16 х да би се створио основни раствор АБТС⁺ радикала. Пре мерења, разблажите основни раствор анхидрованим етанолом док апсорпција не достигне 0,7±0,20 под таласном дужином 735 нм, што је дефинисано као АБТС⁺ радна течност. У отвору за микроплочу: 50 μЛ раствора узорка + 200 μЛ АБТС⁺ радног раствора. Реаговати 10 мин на собној температури, забележити апсорпцију на 735 нм. Формула за израчунавање стопе уклањања радикала АБТС⁺:

\\(АБТС^+ радикал\\ сцавенгинг\\ рате(\\%)=\\лефт(1-\\фрац{A_1-A_2}{A_0}\\ригхт)×100\\) ИЦ₅₀ вредност за уклањање радикала АБТС⁺ је израчуната у складу са тим.

2.3 Статистичка обрада података

Сви скупови података су изражени у формату "средња вредност ± стандардна девијација". За визуелизацију цртања примењен је софтвер ГрапхПад Присм 9.5; СПСС Статистицс 27 је коришћен за статистичко израчунавање. Једносмерна анализа варијансе (АНОВА) је извршена да би се упоредио ниво значајности разлике међу групама; П<0.05 was regarded as statistically significant difference threshold. Pearson correlation coefficient was calculated for correlation analysis between bio‑constituents and antioxidant IC₅₀ parameters.

3. Резултати и анализа

3.1 Варијације укупног садржаја полифенола

Укупни полифенол представља виталне секундарне фенолне метаболите са антиоксидативним потенцијалом. Постојала је значајна разлика између различитих сегмената ткива за Цистанцхе Халокилон-домаћина (П<0.05). Upper segment of HC delivered highest total‑polyphenol value (27.90 mg GAE/g DW), middle segment exhibited lowest concentration (14.43 mg GAE/g DW). For Tamarix‑host Cistanche, statistical difference among three stem segments was not obvious. Generally speaking, TC accumulated higher total‑polyphenol level compared to HC. Total‑polyphenol value of TC upper, middle and lower tissues reached 1.36‑fold, 2.66‑fold and 2.47‑fold relative to corresponding HC tissue segments respectively.

3.2 Варијације укупног садржаја флавоноида

Укупна концентрација флавоноида показала је изражен градијент зависан од ткива за Тамарик-домаћина Цистанцхе (П<0.05). Lower‑segment total‑flavonoid content of TC reached 35.61 mg RE/g DW, which was 1.66‑fold of middle segment and 3.30‑fold of upper segment of TC. Total‑flavonoid readings of HC upper, middle, lower tissues were merely 3.25 mg RE/g DW, 1.99 mg RE/g DW and 2.52 mg RE/g DW respectively. Every tissue segment of Haloxylon‑host Cistanche was significantly inferior to counterpart Tamarix‑host Cistanche in flavonoid accumulation (P<0.05). Such divergence may be attributed to host‑plant species, soil‑microbiome composition and mineral‑element nutritional circumstance of planting field. Our observation is consistent with former research conclusion: basal root‑adjacent stem part of Cistanche accumulates more flavonoid and polyphenol compounds.

3.3 Варијације укупног садржаја шећера

Укупан садржај шећера показао је упадљиву разлику у сегментима за Тамарик-домаћина Цистанцхе (П<0.05). Sugar content progressively increased from upper to lower tissue: upper 56.00 mg DE/g DW; middle 61.11 mg DE/g DW; lower 72.10 mg DE/g DW. In contrast, total‑sugar level of Haloxylon‑host Cistanche maintained narrow range of 14.16‑15.70 mg DE/g DW, without notable tissue‑to‑tissue distinction. Each HC segment had significantly lower total‑sugar concentration than matching TC tissue part (P<0.05). Extreme day‑night temperature difference in Hotan desert climate contributes to carbohydrate accumulation inside Tamarix‑host Cistanche tissues.

3.4 Варијације укупног садржаја тритерпеноида

За обе две варијанте, садржај укупних тритерпеноида доњег сегмента био је статистички већи од садржаја средњег и горњег сегмента (П<0.05). HC lower‑part total‑triterpenoid attained maximum reading 6.75 mg OAE/g DW. TC‑lower triterpenoid concentration (4.59 mg OAE/g DW) was 1.18‑fold versus TC‑middle, 1.13‑fold versus TC‑upper. In general, Haloxylon‑host Cistanche possessed higher total‑triterpenoid pool compared with Tamarix‑host Cistanche (P<0.05).

3.5 Варијације садржаја проантоцијанидина

Концентрација проантоцијанидина је показала значајне разлике у ткиву за обе варијанте (П<0.05). Ranking for Haloxylon‑host Cistanche: HC‑lower (0.546 mg PCE/g DW) > HC‑upper (0.423 mg PCE/g DW) > HC‑middle (0.233 mg PCE/g DW). Ranking for Tamarix‑host Cistanche: TC‑lower (0.498 mg PCE/g DW) > TC‑middle (0.447 mg PCE/g DW) > TC‑upper (0.352 mg PCE/g DW). Apart from middle segment, proanthocyanidin contents of HC upper & lower tissues were significantly higher than TC counterpart segments. However, absolute proanthocyanidin magnitude of Cistanche material remained low, matching visual observation: Cistanche stem cross‑section presents whitish color without deep pigmentation characteristic of high‑proanthocyanidin plant organs.

3.6 Варијације вербаскозида (маркер фенилетаноид гликозида)

Ниво вербаскозида Тамарик-хост Цистанцхе је био знатно виши од Халокилон-хост Цистанцхе (П<0.05). Within single TC stem, verbascoside concentration gradient: TC‑lower (265.81 mg/g DW) > TC‑middle (168.39 mg/g DW) > TC‑upper (61.76 mg/g DW). For Haloxylon‑host Cistanche: HC‑lower (59.74 mg/g DW) > HC‑upper (55.06 mg/g DW) > HC‑middle (35.89 mg/g DW). Verbascoside predominantly accumulates at basal lower stem segments for both ecotypes.

3.7 Варијације ехинакозида (маркер фенилетаноидног гликозида)

Шаблон дистрибуције ехинакозида се драстично разликовао од вербаскозида. ХЦ-горњи сегмент је постигао вршну вредност ехинакозида од 92,93 мг/г ДВ, што представља највише очитавање међу свим измереним узорцима. Концентрација ехинакозида се постепено смањивала од горњег ка доњем делу за Халокилон-хост Цистанцхе. Насупрот томе, Тамарик-домаћин Цистанцхе је показао повећање нивоа ехинакозида који се креће од горњег ка базалном доњем ткиву. Распон садржаја ехинакозида у ТЦ узорцима: 40,78-57,68 мг/г ДВ. Садржај ехинакозида у горњем сегменту ХЦ достигао је 2,27 пута, 2,11 пута и 1,61 пута у односу на ТЦ-горњи, ТЦ-средњи, ТЦ-доњи одвојено. Ипак, ХЦ-средње и ХЦ-ниже концентрације ехинакозида биле су значајно испод ТЦ-средње и ТЦ-ниже вредности (П<0.05). This divergent spatial‑accumulation feature of two major phenylethanoid glycosides is consistent with many previously‑reported Cistanche investigations. Nutrient translocation flow inside parasitic stem and host‑specific physiological traits are presumed to drive this phenomenon, yet precise molecular regulatory mechanism needs further exploration.

3.8 Резултати антиоксидативне активности ин-витро

Мања вредност ИЦ₅₀ одговара јачим антиоксидативним перформансама у уклањању слободних радикала. За тест уклањања радикала ДППХ: Тамарик-домаћин Цистанцхе је показао супериорну активност у односу на Цистанцхе-домаћин Халокилон-а. ИЦ₅₀‑ДППХ од ТЦ: ТЦ‑нижи 5,95 мг/мЛ; ТЦ-средњи 6,57 мг/мЛ; ТЦ-горњи 9,94 мг/мЛ. За ХЦ: ХЦ-ниже 7,15 мг/мЛ; ХЦ-средња 10,32 мг/мЛ; ХЦ-горњи 12,14 мг/мЛ. Доњи сегменти обе варијанте су испоручили оптималан капацитет елиминације радикала ДППХ.

Тест чишћења АБТС⁺ катјона-радикала је створио сличну тенденцију. ТЦ‑нижи ИЦ₅₀‑АБТС⁺=3.28 мг/мЛ; ТЦ-средњи 3,53 мг/мЛ; ТЦ-горњи 5,98 мг/мЛ. ХЦ‑нижи 5,19 мг/мЛ; ХЦ-средња 5,42 мг/мЛ; ХЦ-горњи 6,81 мг/мЛ. Доњи сегменти стабљике поседују најјачу АБТС⁺‑неутралишућу моћ. Укупни низ антиоксидативних капацитета: Тамарик-домаћин Цистанцхе > Халокилон-домаћин Цистанцхе; доњи сегмент > средњи сегмент > горњи сегмент за сваки екотип.

3.9 Анализа корелације између садржаја биоактивног једињења и антиоксиданса ИЦ₅₀

Пирсонова корелациона матрица је илустровала да садржај укупних полифенола, укупних флавоноида, проантоцијанидина, укупног шећера и вербаскозида представља негативну корелацију са параметрима ИЦ₅₀‑ДППХ и ИЦ₅₀‑АБТС⁺. Негативна корелација значи већу концентрацију ових био-супстанци веза са нижом вредношћу ИЦ₅₀ (јача антиоксидативна активност). Тотал-флавоноид је показао изузетно значајну позитивну корелацију са вербаскозидом (П<0.01); total‑polyphenol correlated positively with total‑sugar (P<0.05). The statistical outcome confirms polyphenols, flavonoids, saccharides and verbascoside jointly contribute to in‑vitro antioxidant performance of Cistanche deserticola raw material.

4. Дискусија

Наш упоредни експеримент је показао да сорта биљке домаћин и сегмент ткива стабљике заједно одређују отисак прста хемијског састава за култивисану Ксињианг Цистанцхе десертицола. Тамарик-паразитисани Цистанцхе акумулира обиље укупног-полифенола, тотал-флавоноида, укупног шећера и вербаскозида унутар свог базалног доњег ткива стабљике, концентрација опада навише ка средњим и горњим деловима. За Халокилон-хост Цистанцхе, ткиво горњег стабла концентрише максимум ехинакозида; ткиво доњег стабла садржи највећу количину укупних тритерпеноида и проантоцијанидина. Наши резултати дистрибуције ткива су у складу са више објављених студија компоненти Цистанцхеа из различитих географских извора.

Екстремна дневна температурна разлика у пустињској зони Хотан безводно олакшава биосинтезу и складиштење угљених хидрата, делимично објашњавајући висок садржај укупног шећера измерен у узорцима Цистанцхе домаћина Тамарик. Два маркерска фенилетаноидна гликозида (ехинакозид, вербаскозид) показују супротну тенденцију просторне акумулације унутар меснате стабљике: ехинакозид обогаћује горњи сегмент за екотип домаћина Халокилон, вербаскозид углавном концентрише базални доњи сегмент за оба екотип. Овај посебан образац дистрибуције може се односити на транспорт хранљивих материја паразитских биљака и пут биосинтезе секундарних метаболита модулиран физиолошким сигналима биљке домаћина; основни регулаторни механизам захтева даља истраживања молекуларне биологије.

Из перспективе индустријске примене, ако циљани функционални производи траже висок садржај ехинакозида, материјал горњег сегмента Халокилон-хост Цистанцхе треба да буде изабран као пожељна сировина. Ако се производни циљ фокусира на додатак исхрани оријентисан на антиоксидансе богат полифенол-флавоноиди-вербаскозиди, нижи сегмент Тамарик-домаћина Цистанцхе представља бољу опцију. Мерљиви јазови између ткива и компоненти међу варијететима указују на то да је неопходно узети у обзир тип домаћина и положај сегмента стабла током набавке сировина и процедуре за оцењивање квалитета за производњу додатака исхрани у вези са Цистанцхеом.

Ограничења садашњег истраживања: ова студија је спровела само ин-витро хемијске антиоксидативне тестове. Разлика у фармаколошкој ефикасности ин-виво животињског модела између различитих сегмената ткива Цистанцхеа захтева даљу проверу. Осим тога, фактори животне средине, укључујући годину садње, период жетве, статус хранљивих материја у тлу, такође могу да модификују профил биолошких састојака; комбиновани утицај више фактора треба узети у обзир у накнадној истрази.

5. Закључак

Укратко, тип биљке домаћина и сегмент ткива стабљике намећу значајан утицај на профил биоактивних компоненти и ин витро антиоксидативни капацитет за вештачки култивисану цистанцхе десертицолу сакупљену из округа Целе, Синђианг.

Тамарик-хост Цистанцхе садржи већи ниво укупних полифенола, укупних флавоноида, укупних шећера и вербаскозида у поређењу са Халокилон-хост Цистанцхеом. Ове супстанце достижу максималну концентрацију у доњем сегменту стабљике и опадају према горњим сегментима.

Халокилон-хост Цистанцхе горњи сегмент има највећи садржај ехинакозида, док његов доњи сегмент акумулира максимум укупних тритерпеноидних супстанци.

Доњи сегменти стабљике за обе сорте дају јачу антиоксидативну активност за уклањање слободних радикала ДППХ и АБТС⁺. Укупни полифеноли, укупни флавоноиди, проантоцијанидини, укупни шећери и вербаскозид су позитивно повезани са потенцијом антиоксиданата.

Ови експериментални налази пружају практичну референцу за класификацију сировина, израду спецификација квалитета и развој функционалне хране дубинске обраде Цистанцхе десертицола узгајане у Синђангу.

Референце

[1] Кинеска фармакопејска комисија. Фармакопеја Народне Републике Кине (том Ⅰ) [М]. Пекинг: Цхина Медицал Сциенце Пресс, 2020.

[2] Пенг КСИ, Цхен ЈР, Цуи ХИ, ет ал. Анализа испарљивих супстанци у Цистанцхе-у различитог домаћина из Ксињианга на основу ГЦ-ИМС[Ј]. Наука и технологија прехрамбене индустрије, 2024,45(9):272‑279.

[3] Ниу ИК, Зхао И, Иу КСМ, ет ал. Биоактивна супстанца и анализа разлике у пореклу за Цистанцхе тубулоса у Синђиангу[Ј]. Јоурнал оф Лигхт Индустри, 2022, 37(6):25-33.

[4] Зхао И, Иу КСМ, Веи ИП, ет ал. Функционалне компоненте и истраживање антиоксидативне активности за различите делове ткива Цистанцхе тубулоса[Ј]. Наука и технологија прехрамбене индустрије, 2022,43(11):318‑325.

[5] Лиу ХМ, Зхао И, Иу КСМ, ет ал. Анализа квалитета и свеобухватна процена пустињских врста Цистанцхе десертицола прикупљених из више производних региона Кине[Ј]. Наука и технологија прехрамбене индустрије, 2023,44(8):341‑350.

[6] Фенг Д, Зхоу СК, Зхоу ИКС, ет ал. Утицај укупних гликозида екстрахованих из Цистанцхе десертицола на енергетски метаболизам ХепГ2 туморске ћелијске линије [Ј]. Границе у исхрани, 2023, 10:1117364.